细胞转染是将外源核酸（DNA、RNA、siRNA等）导入真核细胞内，使其在细胞中表达或发挥调控作用的分子生物学技术，是基因功能研究、蛋白制备、基因编辑等实验的核心基础技术。
1. 基因功能研究，实现过表达或沉默特定基因，研究基因功能与细胞表型变化
2. 蛋白生产，在真核细胞中表达重组蛋白
3. 基因编辑，递送CRISPR/Cas9系统组分，实现基因敲除或敲入
4. 构建稳定细胞株，规模化表达重组蛋白、抗体
5. 病毒包装，将病毒载体质粒转入细胞（如293T细胞），包装慢病毒、腺病毒等
按表达时长划分，分为瞬时转染和稳定转染，瞬时转染表达周期短，操作快，外源核酸不整合到宿主基因组中。稳定转染操作周期长，但外源核酸可整合至宿主基因组中，可长期稳定表达。
按应用分，有质粒转染、siRNA转染、CRISPR组分转染等。
（一）化学转染
1. 脂质体转染：操作简便、细胞毒性低，适配多数贴壁细胞，实验室常规首选
2. PEI阳离子聚合物转染：成本低、适配悬浮细胞，适合高通量蛋白表达
3. 磷酸钙共沉淀法：成本低廉，重复性较差，仅适用于293T等易转染细胞
（二）物理转染
1. 电穿孔法：借助瞬时电场击穿细胞膜，适配原代细胞、干细胞等难转染细胞，细胞死亡率相对较高
2. 显微注射法：直接将核酸注入胞核，效率高，仅适用于少量单细胞操作
3. 基因枪法：多用于植物、厚壁微生物，动物细胞应用较少
（三）病毒介导转染
1. 慢病毒：可感染分裂/非分裂细胞，易整合基因组，适合构建稳定细胞株
2. 腺病毒：不整合基因组，瞬时高表达，适合体内短期实验
3. AAV病毒：免疫原性低，体内表达周期长，是基因治疗主流载体
我公司目前已建立了完善脂质体转染以及PEI转染方法，可通过转染实现细胞特定基因过表达或沉默，研究基因特性；瞬时大量表达目标蛋白用于蛋白相关分析；构建慢病毒用于构建稳转细胞系；构建杆状病毒用感染昆虫细胞表达蛋白；构建腺病毒，AAV病毒用于蛋白表达、疫苗研发等。
